Resumen
Archips cerasivorana, la polilla oruga del nido feo, es una especie de polilla de la familia Tortricidae. Se sabe que las orugas de esta especie crean nidos uniendo las hojas de su planta huésped. Dentro de los nidos, viven y se alimentan de las hojas que han sido atadas. Las larvas son de color marrón o amarillo verdoso con una cabeza de color marrón oscuro brillante. Las larvas se pueden encontrar de mayo a julio. La especie pasa el invierno como un huevo, y la pupación tiene lugar dentro del nido. Se observa que las orugas se siguen unas a otras en estelas, un comportamiento provocado por la liberación de feromonas de señalización de sus hileras. A. cerasivorana se encuentra en toda América del Norte, tan al norte como Alaska y tan al sur como Carolina del Norte. La envergadura es de 20-25 mm. Las alas delanteras son de color naranja opaco marcadas con manchas irregulares de color marrón oscuro. Las alas traseras son amarillas con un sombreado anaranjado. Los adultos se pueden encontrar de julio a septiembre en una generación por año.
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Taxonomía
A. cerasivorana se conoce comúnmente como la polilla de la oruga del nido feo. Es una especie de polilla de la familia Tortricidae. Las especies relacionadas incluyen Archips fervidana. Archips rileyana es muy similar a A. cerasivorana, tanto en apariencia como en hábitos larvarios. Al principio, A. rileyana se consideró una subespecie de A. cerasivorana, pero Obraztsov (1959) demostró que tanto los adultos como las larvas de las dos especies pueden separarse. A. cerasivorana se caracteriza por un ano con lados paralelos en el macho, un gran signo romo en la hembra y pináculos más pequeños, a veces del color del cuerpo, en el abdomen de la larva. En contraste, A. rileyana se caracteriza por un ano espatulado en el macho, un signum puntiagudo moderado en la hembra y una pináculo negra muy grande y conspicua en el abdomen de la larva.
Dieta
Las larvas se alimentan de las hojas de las especies Prunus virginiana, Prunus serotina, Crataegus, Rosa, Malus, Cotoneaster, Betula y Populus.
Morfología larvaria
Las larvas son distintas por su coloración. Los estadios tempranos son de color verde amarillento con patas, cabeza, escudo protorácico y escudo anal negros. Los estadios posteriores son de color naranja brillante con la misma esclerotización oscura en contraste y con setas pálidas moderadamente largas y dispersas. Las larvas del último estadio miden de 19 a 26 mm de longitud con un abdomen de color amarillo a verde amarillento oscuro. La cabeza, el escudo protorácico, las patas torácicas y el escudo anal son de color marrón oscuro a negro. Un peine anal está ausente. Las larvas de Archips rileyana son muy similares a las de A. cerasivorana.
Morfología adulta
En los machos adultos, la longitud del ala delantera varía de 7,5 a 9,5 mm; y de 9,0 a 12,0 mm en las hembras. Los adultos son fácilmente reconocidos por el ala delantera naranja con muchas barras plateadas. El color de las alas delanteras varía de naranja brillante a amarillo, a menudo con débiles marcas violáceas. Los machos tienen un pliegue costal en las alas delanteras. Hay manchas marrones cuadradas distintas a lo largo de la costa en el área postmedia y mediana, junto con marcas marrones variables más pequeñas a través del centro del ala en las áreas antermedia y mediana. Las alas traseras y la mayor parte del cuerpo también son de color naranja. La envergadura es de 20-25 mm. Las alas traseras son amarillas con sombreado naranja.
Ciclo de vida y comportamiento
Hay una generación cada año. Las hembras ponen masas de 25-200 huevos en la base de los brotes, a menudo cerca del suelo. Las hembras prefieren principalmente chokecherry. Los huevos pasan el invierno y las larvas del primer estadio eclosionan en mayo. Los adultos se pueden encontrar desde principios de julio hasta mediados de septiembre. A diferencia de muchos tortrícidos, las larvas son sociales y se alimentan en nidos sedosos en las terminales de las plantas hospedadoras. Las redes se hacen alrededor de los brotes terminales del huésped, a veces envolviendo plantas enteras. La pupación ocurre dentro de las células individuales dentro del refugio. Los adultos no son muy activos durante el día y se los puede encontrar descansando en el follaje. Por la noche, se sabe que los adultos se sienten atraídos por las luces. Un nido típico puede contener de 30 a 200 larvas y alcanzar hasta 30 pulgadas de diámetro. El nido se expande cuando la colonia necesita alimento adicional y la alimentación siempre ocurre bajo la protección del nido. Las primeras etapas esqueletizan las hojas, mientras que las etapas posteriores consumen hojas enteras. La pupación ocurre en cámaras construidas en el nido a partir de desechos y seda. Antes de emerger, las pupas se abrirán camino hacia la superficie exterior del nido de seda, donde eclosiona la polilla adulta.
Construcción de carpas
Desde el primer momento, las orugas se agregarán y construirán grandes estructuras de carpas. Estas orugas son una de las pocas de la familia Tortricidae que exhiben un comportamiento social. Hacen estas carpas hilando hilos de seda entre hojas y ramas, lo que las atrae a un nido compacto. Cada hebra de seda se estira ligeramente antes de unirla a una hoja, de modo que una pequeña fuerza (de retracción axial) tire de la hoja ligeramente hacia el nido. Cuando se hilan muchos hilos de seda en las hojas circundantes, las fuerzas de la red eventualmente llevarán a todas las hojas a la forma característica de la tienda. Las orugas generalmente permanecen dentro de los límites definidos por la seda que envuelve su refugio. Ocasionalmente se aventuran fuera del nido, viajando solo distancias cortas para atraer hojas nuevas. En la mayoría de los casos, la colonia encuentra un número suficiente de hojas en su parche contiguo para completar el desarrollo larvario. Si todas las hojas de una tienda de campaña se consumen antes de que las orugas estén listas para pupar, las orugas se verán obligadas a abandonar su nido y encontrar un nuevo lugar de anidación. Durante estas migraciones, las orugas partirán individualmente o en pequeños grupos, dejando pequeños senderos de seda entrelazados con feromonas para guiar a la próxima oruga.
Señalización y seguimiento de senderos
Se ha planteado la hipótesis de que el seguimiento de senderos es un producto de insumos químicos y físicos. La investigación ha demostrado que el comportamiento de seguimiento de senderos en una oruga se origina, en parte, en el seguimiento de las feromonas dejadas por otras orugas. Cada oruga secreta feromonas marcadoras secretadas de las glándulas por las hileras, no se ha demostrado que otras regiones del cuerpo secreten feromonas. Los experimentos han demostrado que las orugas son capaces de seguir rastros preparados con extractos de glándulas, pero tales rastros fueron notablemente menos efectivos que los rastros de control originalmente intactos. Además, las orugas muestran una preferencia por los senderos similares a la seda. Cuando se les presentó una variedad de medios de rastro de feromonas, desde acero no poroso hasta algodón y el rastro original, las orugas experimentales prefirieron el rastro de seda original.
Interacciones con humanos
Las orugas de nido feo causan poco daño permanente a las plantas, además de la deformidad de las ramas. Tienen poco o ningún impacto económico. El mayor problema que plantean es cosmético. Las orugas a veces construyen sus antiestéticos nidos en huertos y jardines. Las orugas tejen follaje que luego alimentan, defecan y pupan. Los nidos se pueden localizar fácilmente mediante inspección visual; se encuentran principalmente en chokecherry, pero también se pueden encontrar en otras maderas duras y arbustos. Para monitorear un huerto en busca de la presencia de orugas, se debe buscar el desarrollo de nidos desordenados de correas, ramitas y hojas.
Retirada de orugas
El mejor medio para la eliminación es podar y destruir los nidos palmeados. Las orugas también se pueden eliminar químicamente mediante el uso de pesticidas. Se pueden rociar pesticidas como la bacteria Bacillus thuringiensis para controlar las larvas jóvenes. Las poblaciones más grandes de larvas más viejas se pueden controlar con un insecticida residual, pero el daño rara vez es suficiente para justificar un tratamiento que pueda poner en peligro el resto del medio ambiente local. También se pueden usar pesticidas bioracionales como jabón insecticida, piretinas, espinosad y tenbufenozida.